一、概述 

淋巴瘤是临床上诊断难度较大的一类疾病，需要综合血液病理学（包括组织和细胞形态学、免疫表型、遗传学和分子生物学）与临床特征才能做出精确诊断。流式细胞学（flow cytometry，FCM）免疫分型作为与免疫组织化学相补的诊断方法，以其快速、客观、定量及多参数分析等独特优势，在淋巴瘤诊断方面发挥着不可替代的作用[1，2]。为了提高淋巴瘤的诊断和治疗监测水平，规范我国对此类疾病的诊治程序，中国抗癌协会血液肿瘤专业委员会组织国内相关的流式、血液肿瘤和病理专家经过多次讨论，结合国外已有文献资料和国内临床经验，制订了流式检测技术在淋巴瘤诊断中应用的专家共识。本共识旨在推动流式检测技术在淋巴瘤诊疗中的应用，促进多学科合作在淋巴瘤诊疗中的发展。由于目前FCM对霍奇金淋巴瘤诊断价值有限，本文内容仅涉及FCM在非霍奇金淋巴瘤（non-Hodgkin lymphomas，NHL）中的应用。

二、FCM在淋巴瘤诊断中的地位与作用

FCM在淋巴瘤诊断中的作用主要分为三个方面：确定诊断、辅助诊断和微小残留病（minimal residual disease，MRD）检测。

1．可以明确淋巴瘤诊断：

主要见于具有特征表型并常以白血病形式存在的淋巴瘤类型，如急性淋巴细胞白血病/淋巴母细胞淋巴瘤（ALL/LBL）、慢性淋巴细胞白血病/小淋巴细胞淋巴瘤（CLL/SLL）、毛细胞白血病（HCL）、浆细胞肿瘤（PCN）、T大颗粒淋巴细胞白血病（T-LGLL）、NK细胞-慢性淋巴增殖性疾病（NK-CLPD）、成人T细胞白血病/淋巴瘤（ATLL）等。

2．作为淋巴瘤辅助诊断：

主要是指免疫表型不具有特异性，或具有特定遗传学异常的淋巴瘤类型，FCM可以作为形态学、遗传学的重要补充，起到辅助诊断的作用，常见的有：边缘区淋巴瘤（MZL）、滤泡淋巴瘤（FL）、幼淋巴细胞白血病（PLL）、套细胞淋巴瘤（MCL）、淋巴浆细胞淋巴瘤/华氏巨球蛋白血症（LPL/WM）、Burkitt淋巴瘤（BL）、肝脾T细胞淋巴瘤（HSTCL）、蕈样霉菌病/Sezary综合征、非特指型外周T细胞淋巴瘤（PTCL，NOS）和血管免疫母细胞T细胞淋巴瘤（AITL）。FCM在大B细胞淋巴瘤中的诊断作用有限，对于有骨髓或淋巴结等组织/器官受累者有一定的参考价值。

3．MRD监测：

多参数FCM在CLL/SLL的MRD检测中已得到广泛地应用和认可，其次是套细胞淋巴瘤和毛细胞白血病，在其他类型淋巴瘤中的应用则少见报道。虽然PCR技术被认为是监测淋巴瘤MRD最敏感的指标，但随着八色以上FCM的临床应用，同时以10－4作为cut-off值时，FCM和PCR技术可以相互补充。

三、FCM检测流程与方法

（一）样本处理与准备

1．样本来源及制备：

FCM样本主要来源于骨髓、外周血、淋巴结、细针穿刺等细胞学样本和来源于淋巴结、结外器官或组织的新鲜组织学样本以及脑脊液、胸腹水等体液标本。所有样本处理的原则是获得细胞产量最大化的单细胞悬液，同时保持细胞的活性和完整性，防止目标细胞丢失。骨髓、外周血标本为天然单细胞悬液，抽取标本置于抗凝管中（肝素或EDTA），室温保存，尽可能12 h内处理标本。若标本放置时间>12 h，应选择肝素抗凝。组织学样本离体后立即置于磷酸盐缓冲液（PBS）、RPMI 1640培养液等运输介质或用生理盐水浸湿的消毒纱布包裹，在送往实验室的整个过程中需保持其湿度，尽快送检，长途运输建议使用RPMI 1640培养液保存。运输中可加冰袋，但需避免样本与冰袋直接接触。样本应尽量立即处理，将组织沿最大面剖开，肉眼观察标本是否有结节、溶血或坏死。通常部分标本用于组织学诊断，部分标本做流式细胞学及分子病理检测。为了防止肿瘤局灶性分布带来的漏诊，可将样本多点分割，每份厚度2～3 mm，送流式检测的样本应紧邻组织学部分，手动研磨或匀浆机将组织分散成单个核细胞，过滤后进行抗体标记[3，4]。

2．细胞存活率检测及细胞采集数：

检测前需做细胞存活率评估，通常采用着色DNA的荧光染料（如碘化丙啶和台盼蓝），可穿过死细胞膜进入内部而染色，需要注意的是，这些染料能和固定后的细胞染色，因此细胞存活率检测必须采用未做固定的样本。采集的目的细胞总数应达到5 000个以上，特殊情况也应尽量达到1 500个[3]。

（二）NHL免疫表型特点

FCM诊断NHL涉及B细胞、T细胞和NK细胞的相关系列抗体，这些抗体不仅可用于细胞表型检测，还可以对细胞克隆性及细胞功能进行鉴别。只有熟练掌握血细胞发育各个阶段，以及病理和生理情况下可能出现的表型特征（包括细胞大小、颗粒性、胞膜和胞质抗原的表达），才能做到精确诊断。

1．B细胞淋巴瘤：

正常成熟的循环B细胞表达CD19、CD20、CD79b、CD22、FMC7和膜表面免疫球蛋白（surface immunoglobulin，sIg）。sIg的轻链kappa（sIgκ）和lambda（sIgλ）比值在1∶3和3∶1之间。在B细胞的成熟过程中，末端脱氧核苷酸转移酶（TdT）、CD34、CD10等不成熟标志逐渐消失，胞质Ig重链重排时出现CD79a和PAX5表达，CD20在Ig轻链重排时才开始表达，且表达强度逐步增强。正常B细胞成熟过程中抗原的表达增强、减弱或消失多呈渐进性，而肿瘤细胞抗原表达多为均质性增强或减弱[5]。

（1）免疫表型特点：大多数成熟B细胞淋巴瘤为表达成熟B细胞标志物（CD19、CD20和CD22等）的单克隆B细胞，某些类型淋巴瘤具有独特的免疫学特征，结合前向散射光（FSC）和CD5、CD10等抗原的表达特征可以对成熟B细胞淋巴瘤进行进一步区分归类。对于大部分小B细胞淋巴瘤，FCM结合遗传学结果可以做出分型诊断，具体可参见中国B细胞慢性淋巴增殖性疾病诊断专家共识（2014年版） [6]，对于组织样本活检考虑为惰性小B细胞肿瘤伴明显浆细胞分化，并涉及与浆细胞肿瘤鉴别的病例，可行病变部位穿刺及FCM检查，有助于明确淋巴瘤的具体类型。而大B细胞淋巴瘤由于累及部位所限以及样本制备中的细胞破坏，则更多依赖免疫组织化学的方法确诊[2，7]。常见的成熟B细胞淋巴瘤免疫表型鉴别诊断见图1。

（2）克隆性检测：绝大多数成熟B细胞肿瘤限制性表达sIg轻链κ或λ（κ∶λ>3∶1或<1∶3）。检测中如果其他表型正常，但不表达sIg，建议进一步行胞质轻链检测，因后者仍可能出现限制性表达，只有少数成熟B细胞肿瘤可同时有胞膜和胞质的轻链表达缺失现象。几乎所有的浆细胞肿瘤都限制性表达胞质轻链，通过透膜方法检测胞质轻链可以确定克隆性，仅有极少数病例胞质、胞膜可同时表达或缺失轻链。另外生发中心B细胞可以出现膜表面轻链表达下调。

2．T细胞淋巴瘤：

T细胞占外周血淋巴细胞的60%～70%，在胸腺中分化发育，成熟过程中CD34、TdT、CD99和CD1a等抗原消失，出现T细胞受体（TCR）基因重排，并最终与膜CD3形成复合物。αβ和γδT细胞在胸腺发育早期出现分化，绝大多数（>95%）循环中的T细胞为TCRαβ型。γδT细胞主要分布在脾脏红髓、呼吸道和肠道的黏膜和皮下组织内。正常外周血CD4/CD8比值约为2∶1，骨髓中则相反，约为1∶2，正常成熟T细胞表达CD2、CD3、CD5和CD7，表达CD4或CD8，在外周血中CD4、CD8双阳性和CD4、CD8双阴性细胞比例极低。

（1）免疫表型特点：以下表型时提示有T细胞淋巴瘤的风险：

①CD4∶CD8比值失衡，大于10∶1或小于1∶10；

②CD4＋CD8＋或CD4－CD8－比例增高；

③泛T抗原表达异常，最常见CD7、CD5、CD2或CD3抗原表达强度减弱或增强；

④淋巴细胞群中CD16、CD25、CD56、CD57、CD279等抗原表达增多；

⑤伴异常抗原表达（如CD30、CD10、CD20、CD103、CD13和CD33等）。

需要注意的是部分样本中由于肿瘤细胞比例较低而被反应性T细胞掩盖，此时可结合某些标志物的减弱或增强，通过多参数设门进行分析判断。由于良性增生的T细胞也会出现某些抗原表达强度改变，因此不能根据单一异常线索直接诊断为淋巴瘤。对于外周T细胞淋巴瘤及淋巴组织增生性疾病的诊断与分型，主要依靠活检、免疫组织化学染色及TCR基因重排检测，单纯靠FCM表型分析能确诊的类型较为有限（图2）[2，8]。

（2）克隆性检测：70%的αβT细胞可以通过FCM检测TCRvβ的24种表位鉴定其克隆性，出现其中1种TCRvβ抗原的显著增高或者24种表位总和的显著减低提示T细胞的克隆性增生。由于某些免疫反应中也会出现T细胞的克隆性增生，即使FCM检测到克隆性T细胞存在，也要结合临床确定其是否为肿瘤性。如有疑虑，可以通过PCR的方法检测TCR基因重排来提高检出的敏感度和特异性[8]。

3．NK细胞淋巴瘤：

正常NK细胞表达CD2和CD7，部分表达CD8，不表达sCD3、CD5、CD4和TCR，NK细胞特征性地表达CD16、CD56、CD94、CD161和颗粒酶B（granzyme B），或多或少表达CD57和CD8dim，活化的NK细胞在胞质中表达CD3的ε和ζ链，FCM检测结果为sCD3－，cCD3（ε/ζ）＋。外周血中存在两个NK细胞亚群，绝大多数为CD56dimCD16＋NK细胞，是具有杀伤功能的成熟NK细胞，少数为CD16－CD56strNK细胞，主要分泌细胞因子。

（1）免疫表型特点：通常为sCD3－CD5－伴有NK细胞标志物（CD16、CD56和CD57）的表达，部分可出现CD2和CD7表达减弱或缺失，少数病例可获得CD5的表达。侵袭性NK细胞与EB病毒感染高度相关，白血病表型多为CD3－CD16－CD56str，而NK-CLPD的细胞表型为CD3－CD56dimCD16＋，表型更为成熟；结外鼻型NK/T淋巴细胞淋巴瘤（ENTCL）典型表型为sCD3－cCD3±CD2＋CD56＋，其他NK相关抗原通常为阴性。常见的T/NK细胞淋巴瘤见图2。

（2）克隆性检测：临床工作中通常选择CD158a/h，CD158b、CD158e、CD158k和CD158i等KIR系列抗体用于NK细胞克隆性检测，但目前市面上的抗体仅能覆盖部分CD158抗原簇[8]。与T细胞淋巴瘤类似，FCM检测到NK细胞克隆性并不意味着绝对恶性，需要结合临床背景包括是否有EB病毒感染等进行综合分析。

（三）抗体筛选

1．NHL诊断：

为了尽可能地优化抗体和样本用量及对不同亚型淋巴瘤的精确诊断，临床检测中通常采用两步法：先应用一线抗体确定肿瘤属性和系别，随后应用二线抗体进行精准分型。在具体抗体选择方面，可参考国际认可的标准化方案或专家共识（如Euroflow、ICCS）中推荐的荧光染料和克隆号，例如检测cCD3应选择克隆号为UCHT1能识别CD3T1链的单抗，检测核TdT（NuTdT）可选择克隆号为HT-6兔抗人的FITC标记的多克隆抗体。细胞内抗原检测优先选择小分子荧光素如FITC。B系一线初筛的抗体包括：CD5、CD10、CD19、CD20、CD45、κ和λ；T/NK系一线初筛抗体包括CD2、CD3、CD4、CD5、CD7、CD8、CD45和CD56。确定为肿瘤细胞及其系别来源以后，进行第二步全面精细检测。用于B细胞淋巴瘤精细分型的二线抗体有：CD11c、CD22、CD23、CD25、CD38、CD43、CD79b、CD103、FMC7、bcl-2、cκ、cλ；T/NK细胞淋巴瘤的二线抗体有：cCD3、CD10、CD16、CD25、CD26、CD30、CD57、TCRαβ、TCRγδ、颗粒酶B、穿孔素（perforin）和cTIA-1等[9]。

近年来发现一些新的抗体在淋巴瘤诊断及分型中具有重要价值，已经陆续作为二线抗体应用于临床，其中B系相关的有CD49d、CD52、CD81、CD123、CD160、CD200；T/NK系相关的有CD279（PD1）、CD94、CD161和CD158（KIR）系列抗原[10]。

2．MRD检测：

较为成熟的FCM-MRD检测方案主要集中于B细胞淋巴瘤，由于T/NK细胞淋巴瘤病例往往缺乏明确的克隆性依据，FCM对T/NK细胞淋巴瘤的MRD检测尚不成熟，能用FCM进行MRD检测的标本主要为骨髓、外周血和脑脊液。

（1）慢性淋巴细胞白血病MRD：ERIC（European Research Initiative on CLL）分别于2007年、2013年和2016年推荐了慢性淋巴细胞白血病MRD检测的四色、六色和八色标准化方案[11，12，13]。相对正常B淋巴细胞而言，慢性淋巴细胞白血病细胞除表达CD5外，CD20、CD22、CD79b、CD81表达可见明显下调或消失，而CD43高表达。根据这些免疫表型特点，利用八色单管方案：CD19/CD20/CD5/CD43/CD79b/CD81/CD22/CD3，获取白细胞总数达2×106时，检测灵敏度可达10－5。

（2）其他类型淋巴瘤MRD：80%～90%的套细胞淋巴瘤患者初发时可见骨髓或外周血浸润，这部分患者可以进行FCM-MRD检测。正常B淋巴细胞表达LAIR-1（CD305）、CD11a、CD62L、CD200，而套细胞淋巴瘤的肿瘤细胞不表达或明显低表达上述抗原，利用这些免疫表型特征可以很好地检测套细胞淋巴瘤MRD。（CD3/CD14/CD56）/LAIR-1/CD19/CD5/CD11a/sIgλ/sIgκ/CD45检测方案灵敏度可达10－4，其中CD3/CD14/CD56用以排除正常T、NK细胞以及单核细胞的干扰；CD3/CD5/CD19/CD20/CD23/CD45/CD62L/CD200检测方案灵敏度可达2×10－4。典型毛细胞白血病的肿瘤细胞则过表达CD19、CD20、CD22和LAIR-1，同时表达CD11c、CD25、CD103和CD123，利用CD3/CD19/CD20/CD25/CD45/CD103/CD123/LAIR-1抗体组合检测MRD的灵敏度也可达到10－4，并且与PCR技术有很好的一致性[14，15，16]。由于骨髓/外周血浸润率低，其他类型淋巴瘤的MRD检测少见报道。理论上只要初发时在骨髓或外周血中能检出肿瘤细胞，并且具有淋巴瘤相关免疫表型，均可利用FCM技术进行MRD检测。值得注意的是，CD20等单克隆抗体在治疗中的应用，很可能会给FCM-MRD检测技术带来假阴性结果，数据分析时应紧密结合临床。

（四）结果分析与报告

CD45/SSC设门应用最为广泛，CD19（CD20）/SSC或CD19（CD20）/CD45设门主要针对B细胞白血病/淋巴瘤，但利妥昔单抗治疗后不宜采用CD20设门；（m/cCD3）/SSC或（m/cCD3）/CD45设门主要用于T细胞白血病/淋巴瘤。NK/T细胞淋巴瘤容易丢失某一种或者多种标志，加上经常存在正常淋巴细胞干扰，设门较为困难，建议先从T和NK标记中选择2个以上参数设门，再进行后续抗原检测。

报告中除患者的个人信息、标本类型、送检日期、报告者署名及日期等一般资料外，还应详细描述淋巴瘤细胞的比例、散射光特征、系别、成熟度以及不同抗原的表达特征（增强、减弱、是否缺失以及异常获得等），同时可以显示正常值范围，避免仅对结果进行简单的描述，尽可能给出可能的诊断以指导临床进一步综合判断。如果没有检测到异常细胞，可直接报告各类细胞所占比例。需要注意的是FCM的阴性结果并不能除外骨髓有淋巴瘤浸润；如果FCM检测到单克隆淋巴细胞但缺乏形态学证据，需要在报告中注明，必要时考虑再次行活检，并建议随访[9，17，18]。

四、质量控制

FCM质量控制主要涉及样本、仪器、试剂、人员等。与NHL诊断相关的需注意以下几个方面：

（1）用于实体瘤FCM检测的样本应为具有代表性的活检样本的部分，以防止因采样误差而导致与形态学结果的不一致；

（2）为防止目的细胞丢失，细胞学样本不推荐使用淋巴细胞分层液分离单个核细胞；

（3）组织学样本如红细胞较多，需加入少量肝素抗凝剂，但不可用甲醛或其他固定剂固定；

（4）样本处理过程中应采用溶血剂处理红细胞，氯化铵溶血法适用于骨髓和外周血，而组织学标本尽可能使用甲酸溶血法；

（5）检测B细胞sIg或轻链时，染色前需要洗涤2～3遍；

（6）在轻链检测时如采用一种单抗检测结果为阴性时，需更换克隆号复测，或采用多克隆抗体标记以明确为真阴性[3，19]。

以临床为基础的多学科综合诊断治疗是淋巴瘤诊治未来发展的方向。本共识综合阐述了FCM在淋巴瘤诊断及疾病跟踪监测中的应用，包括方案设计、质量控制以及MRD检测等内容，希望能对淋巴瘤临床和病理工作起到补充作用，未来将结合临床和病理的发展，不断完善该共识。

参与编写专家组成员（按单位名称汉语拼音字母顺序排列）：

北京大学肿瘤医院淋巴肿瘤内科（谢彦、朱军）；复旦大学附属肿瘤医院病理科（平波）；华中科技大学同济医学院附属同济医院血液内科（毛霞、周剑峰）；南京医科大学第一附属医院血液科（李建勇、吴雨洁、徐卫）；上海交通大学附属瑞金医院血液学研究所（翁香琴）；四川大学华西医院病理科（步宏、刘卫平、赵莎）；中国医学科学院北京协和医学院北京协和医院病理科（卢朝辉）；中国医学科学院血液病医院病理中心（汝昆、王慧君），淋巴肿瘤中心（邱录贵）；中华医学会中华病理学杂志编辑部（常秀青）；中华医学会中华血液学杂志编辑部（董文革）

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